實驗原理：

凍存和復蘇的原則：慢凍快融。

當細胞冷到零度以下，可以產(chǎn)生以下變化：細胞器脫水，細胞中可溶性物質(zhì)濃度升高，并在細胞內(nèi)形成冰晶。如果緩慢冷凍，可使細胞逐步脫水，細胞內(nèi)不致產(chǎn)生大的冰晶；相反，結晶就大，大結晶會造成細胞膜、綱胞器的損傷和破裂。復蘇過程應快融，目的是防止小冰晶形成大冰晶，即冰晶的重結晶。復蘇細胞應采用快速融化的方 法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內(nèi)即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結晶對細胞造成損傷。

實驗材料

15ml離心管、培養(yǎng)皿、滴管 、酒精燈、培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)液、PBS、75%酒精、0.25%胰酶、超凈工作臺、二氧化碳培養(yǎng)箱、倒置顯微鏡、顯微鏡、計數(shù)板、離心機、恒溫水浴箱、冰箱（4℃、-20℃、-70℃）、液氮罐、凍存管、凍存液、廢液缸等。

實驗步驟：

一、細胞凍存

1.吸取傳代后的細胞懸液，離心，去除培養(yǎng)液，加入凍存液，分裝凍存管（凍存管內(nèi)細胞數(shù)目一般為（5～10）×106個/ml，2ml凍存管中一般放1～1.5ml細胞）。

2.按步凍存

冷凍保存方法一：標準的凍存程序為降溫速率-1～-2℃/min；當溫度達-25℃以下時，可增至-5～-10℃/min；到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。

冷凍保存方法二：冷凍管置于已設定程序之程序降溫機中每分鐘降1～3℃至-80℃以下，再放入液氮長期保存。

二、細胞復蘇

1.取出冷凍管，立即放入37℃水浴箱中快速解凍，輕搖冷凍管使其在1分鐘內(nèi)全部融化，移入無菌操作臺內(nèi)。

2.打開凍存管，將細胞懸液吸到離心管中。

3.1000rpm離心10分鐘，棄去上清液。

4.加適當培養(yǎng)液后將細胞轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中，37℃培養(yǎng)，第二天觀察生長情況。

注意事項

1、吸取過營養(yǎng)液后的吸管不能再用火焰燒灼，因殘留在吸管頭中營養(yǎng)液能燒焦形成炭膜，再用時會把有害物帶入營養(yǎng)液中。

2、不能用手觸及已消毒器皿瓶口、瓶塞內(nèi)部，吸管前部等所有可能不細胞接觸的部分，如已接觸，要用火焰燒灼消毒或取備品更換。

3、開啟、關閉長有細胞的培養(yǎng)瓶時，火焰滅菌時間要短。防止因溫度過高燒死細胞。

4、換液時傾倒廢液，瓶口不能接觸廢液缸，速度不能過快，防止廢液四濺。

5、吹打細胞時，要注意邊角的細胞是否吹打下來。

6、手或相對較臟的物品丌能經(jīng)過開放的瓶口上，即不可以在開放容器上方操作。

7、每次操作只處理一株細胞，以免造成細胞交叉污染。

8、注意自身的安全，對于來自人源性或病毒感染的細胞株應特別小心。操作過程中，應避免引起氣溶膠的產(chǎn)生，小心有毒性試劑例如DMSO，并避免尖銳物品傷人等。

9、從增殖期到形成致密的單層細胞以前的培養(yǎng)細胞都可以用于凍存，但對數(shù)生長期細胞。在凍存前一天換一次培養(yǎng)液。

10、將凍存管放入液氮容器或從中取出時，要做好防護工作，以免凍傷。

11、凍存和復蘇一般用新配制的培養(yǎng)液。